Unsere netzartigen Mesh-Mikroelektrodenarrays (Mesh MEAs) sind optimale Werkzeuge für Forschende, die die Elektrophysiologie von 3D-neuronalen und kardialen Gewebemodellen untersuchen. Entwickelt für nicht-invasive, langfristige Elektrophysiologie, integrieren sich unsere Mesh MEAs nahtlos in Sphäroide und Organoide und ermöglichen eine einfache Aufzeichnung und Stimulation innerhalb des Gewebes.
Poröse Dünnfilm-Polyimid-MEAs wurden am NMI in den frühen 2000er Jahren für eine verbesserte Schnittstelle mit In-vitro-Gewebepräparaten entwickelt (Stett et al., 2007) und sind als pMEAs von Multi Channel Systems erhältlich. Unsere Polyimidtechnologie wurde zum Teil zur Unterstützung klinischer Netzhautimplantate entwickelt (zusammen mit der inzwischen aufgelösten Retina Implant AG) und wurde in großem Umfang für implantierbare Geräte verwendet (Jones et al., 2016; Pascual et al., 2023; Steins, 2023), einschließlich poröser Optionen zur Verbesserung der Schnittstelle mit dem Gewebe.
An anderer Stelle wurde 2012 erstmals über Mesh-MEAs für In-vitro-Experimente berichtet (Tian et al., 2012). Diese Arbeit war ein früher Schritt hin zu einer großen Anzahl von Arbeiten über implantierbare Mesh-MEAs (vom Labor von Charles Lieber und anderen als „Mesh-Elektronik“ bezeichnet) (Hong et al., 2018). Mesh-MEAs verwenden Polymerstrukturen mit zellularen Merkmalen und minimieren so die mechanische Fehlanpassung an Zellen und Gewebe, minimieren die Reaktion von Fremdkörpern und optimieren die Aufzeichnungsqualität und Langlebigkeit.
Mit dem Aufkommen der neuralen Organoide in den frühen 2010er Jahren war die Anwendung von Mesh-MEA-Konzepten auf diese 3D-In-vitro-Modelle nur logisch. Eine primäre Herausforderung für Mesh-MEAs, ob in vitro oder in vivo, ist die elektrische Verpackung oder die Anschlüsse an externe Elektronik. Eine weitere Herausforderung für in vitro Mesh-MEAs ist das Design für eine einfache Handhabung und für den Austausch von Medien sowie die Kompatibilität mit Sterilisation und Langzeitstabilität. Eine organoidspezifische MEA war eine häufige Forderung, sowohl von den Teilnehmerinnen und Teilnehmern des MEA-Meetings als auch von unseren Kolleginnen und Kollegen aus den Gruppen Elektrophysiologie und Molekulare Neurobiologie am NMI.
In enger Zusammenarbeit mit dem Max-Planck-Institut für Molekulare Biomedizin und unter der Leitung von Dr. Thomas Rauen und Prof. Hans Schöler haben wir eine hochmoderne Mesh-MEA-Plattform entwickelt. Dieser innovative Ansatz wurde speziell entwickelt, um Proof-of-Concept-Experimente voranzutreiben, indem Mesh-MEAs nahtlos in neuronale Organoide integriert wurden, um die Grenzen der neurobiologischen Forschung zu erweitern (McDonald et al., 2023). In jüngster Zeit haben wir Mesh-MEAs mit fortschrittlichen Verpackungsmethoden entwickelt, um die Skalierbarkeit der Herstellung zu verbessern, einschließlich Versionen mit Drahtbonding von Polyimid-Chips (Stumpp et al., 2023) und verbesserten Well-Designs (Bilder oben).
Wir lassen uns weiterhin von der hervorragenden Arbeit der internationalen MEA-Gemeinschaft inspirieren und lernen von ihr. Es wurden weitere Lösungen für Sphäroide vorgestellt (Kireev et al., 2019; Li et al., 2019; Kalmykov et al., 2021; Le Floch et al., 2022; Yang et al., 2024). Diese Liste erhebt keinen Anspruch auf Vollständigkeit, und wir sind immer daran interessiert, mehr über die neuesten Technologien zu erfahren!
Hong, G. et al. (2018) ‘Mesh electronics: a new paradigm for tissue-like brain probes’, Current Opinion in Neurobiology, 50, pp. 33–41. Available at: doi.org/10.1016/j.conb.2017.11.007.
Jones, P.D. et al. (2016) ‘In vitro and in vivo probes with mushroom-shaped microelectrodes - tools for in-cell electrophysiology’, in 10th International Meeting on Substrate-Integrated Microelectrode Arrays. Reutlingen. Available at: doi.org/10.3389/conf.fnins.2016.93.00076.
Kalmykov, A. et al. (2021) ‘Bioelectrical interfaces with cortical spheroids in three-dimensions’, Journal of Neural Engineering, 18(5), p. 055005. Available at: doi.org/10.1088/1741-2552/abf290.
Kireev, D. et al. (2019) ‘N3-MEA Probes: Scooping Neuronal Networks’, Frontiers in Neuroscience, 13, p. 320. Available at: doi.org/10.3389/fnins.2019.00320.
Le Floch, P. et al. (2022) ‘Stretchable Mesh Nanoelectronics for Three‐Dimensional Single‐Cell Chronic Electrophysiology from Developing Brain Organoids’, Advanced Materials, p. 2106829. Available at: doi.org/10.1002/adma.202106829.
Li, Q. et al. (2019) ‘Cyborg Organoids: Implantation of Nanoelectronics via Organogenesis for Tissue-Wide Electrophysiology’, Nano Letters, 19(8), pp. 5781–5789. Available at: doi.org/10.1021/acs.nanolett.9b02512.
McDonald, M. et al. (2023) ‘A mesh microelectrode array for non-invasive electrophysiology within neural organoids’, Biosensors and Bioelectronics, 228, p. 115223. Available at: doi.org/10.1016/j.bios.2023.115223.
Pascual, D. et al. (2023) ‘A flexible implant for acute intrapancreatic electrophysiology’, Biomedical Microdevices, 25(3), p. 35. Available at: doi.org/10.1007/s10544-023-00662-2.
Steins, H. (2023) A flexible protruding microelectrode array for visceral neuromodulation. 1. Auflage. München: Verlag Dr. Hut (Biomedical microtechnologies, volume 27).
Stett, A. et al. (2007) ‘Improving of signal-to-noise ratio of electrophysiological recordings from explanted retinas by using perforated microelectrode arrays’, in Mikrosystemtechnik Kongress. Mikrosystemtechnik Kongress, Dresden: VDE Verlag GmbH.
Stumpp, T. et al. (2023) ‘Scalable mesh microelectrode arrays for neural spheroids and organoids’, Current Directions in Biomedical Engineering, 9(1), pp. 575–578. Available at: doi.org/10.1515/cdbme-2023-1144.
Tian, B. et al. (2012) ‘Macroporous nanowire nanoelectronic scaffolds for synthetic tissues’, Nature Materials, 11(11), pp. 986–994. Available at: doi.org/10.1038/nmat3404.
Yang, X. et al. (2024) ‘Kirigami electronics for long-term electrophysiological recording of human neural organoids and assembloids’, Nature Biotechnology [Preprint]. Available at: doi.org/10.1038/s41587-023-02081-3.